Page 121 - 《精细化工》2021年第3期

第 3 期 姚 周，等: 聚氨酯-Ch 水凝胶的制备及其作为伤口敷料的性能 ·541·

将制备的水凝胶在去离子水中浸泡 7 d，每隔 剂，50 ℃真空干燥得到干凝胶。DPU-Ch 水凝胶合
12 h 过滤并换一次水除去未反应完的单体和引发 成反应路线如下：

1.4 测试及表征 显微镜中进行微观形貌分析。
1.4.1 FTIR 测试 1.4.6 抗菌性测试
采用傅里叶变换红外光谱仪对待测水凝胶干胶 采用 GB/T 21866—2008 [18] 测定水凝胶的抗菌
–1
膜进行全反射测试。测试范围为 4000~600 cm ，扫 性能，测试菌种：革兰氏阴性菌大肠杆菌（E.coil）
–1
描次数为 32，分辨率为 2 cm 。 与革兰氏阳性菌金黄色葡萄球菌（S.aureus）。将细
1.4.2 水凝胶溶胀性能测试 菌菌种接种至营养肉汤中，在恒温摇床中 37 ℃，
将水凝胶于 50 ℃真空干燥至恒重，取大小相 120 r/min 过夜培养，用营养肉汤依次做 10 倍递增
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近，质量相等的凝胶块，浸泡于 37 ℃的去离子水 稀释液，选择 1×10 CFU/mL 的菌液并吸取适量均
中。间隔一定时间（t）后取出称重，根据式（1） 匀涂布在固体琼脂培养基（具体的制备方法：取营
计算水凝胶的溶胀比（SR）： 养肉汤 100 mL 加入 1.5 g 琼脂粉末，溶解后在 120 ℃
m  m 下灭菌 30 min，取出冷却得到固体琼脂培养基），
SR  t 0 （1）
m 0 将裁剪成约为 15 mm×15 mm×10 mm 的水凝胶覆盖
式中：m 0、m t 分别为干凝胶和 t 时刻水凝胶质量，g。 在培养基表面，37 ℃下培养 24 h，观察覆盖膜周围
1.4.3 水凝胶保水性能测试 有无抑菌圈产生以及覆盖膜下细菌生长状态。
将大小相近，质量相等的干水凝胶放入去离子 1.4.7 溶血率测试
水中溶胀至恒重，置于 37 ℃，50%的湿度下，每隔 材料的溶血率是通过测定静态条件下血红蛋白
t 时间后称重，直至样品恒重，根据式（2）计算其 的释放量来评价的 [19] 。分别向蒸馏水和 PBS 缓冲液
保水率（WR）： 中加入稀释血液〔由 2 mL 葡萄糖-柠檬酸血液（ACD
m  m 全血），用 2 mL PBS 缓冲溶液稀释得到〕作为阳性
WR / %  t 0  100 （2）
m  m 0 对照和阴性对照。将加入 DPU-Ch 水凝胶、PBS 缓
e
式中：m t 、m 0 和 m e 分别为 t 时水凝胶、干凝胶和溶 冲液和稀释血液的试样作为测试组，在 545 nm 处用
胀平衡的水凝胶质量，g。 紫外-可见分光光度计测定其吸光度。根据式（3）
1.4.4 水凝胶压缩力学性能测试 计算材料溶血率：
将大小相近，质量相等的干水凝胶试样放入去 /%  溶血率 OD  OD n  100 （3）
s
离子水中浸泡，直至恒重。制备成 10 mm×10 mm× OD  OD n
p
10 mm的立方块进行性能测试，压缩速率为20 mm/min， 式中：OD s 、OD n 和 OD p 分别为样品、阴性对照和
每个样测试 3 次并取平均值 [17] 。 阳性对照的吸光度。
1.4.5 SEM 测试 1.4.8 细胞毒性测试
在液氮中淬断冷冻干燥后的水凝胶样品，对其 采用 GB/T 16886.5—2017 [20] 中的四甲基偶氮唑
横断面进行喷金处理，贴在导电胶上放入扫描电子 蓝（MTT）细胞毒性实验来测定凝胶的细胞存活率。