Page 140 - 《精细化工》2020年第6期
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·1206·                            精细化工   FINE CHEMICALS                                 第 37 卷

            浓度为 0.1、0.3、0.5 mol/L NaCl 溶液进行梯度洗脱,                                        A   A 
                                                                       OH清除率     / %    1   1  2     -  100    (4)
            以 5 mL/min 流速收集,每 10 mL 收集一管,用苯酚-                                             A 0  
            硫酸法    [12] 于 490 nm 下跟踪监测,以管号为横坐标,
                                                               式中:A 1 为多糖溶液样品的吸光度;A 2 为无 H 2 O 2
            吸光值为纵坐标绘制洗脱曲线,收集主峰位置管号                             反应体系的对照组吸光度;A 0 为 2.0 mL 蒸馏水代替
            的洗脱液,收集得到 4 种多糖组分,其中第 4 种组                         多糖溶液的空白组吸光度。
            分峰多糖含量远大于前 3 种,因此将之浓缩冻干得                           1.2.4.3    清除•O 2 能力的测定
                                                                             –
            到纯化的 AMP。                                              参照文献[15]方法,以 V C 作为阳性对照,在
            1.2.2   AMP 单糖组成分析                                 325 nm处测定不同浓度多糖与邻苯三酚反应体系溶
                 采用 1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP)柱前衍                   液吸光值(A)。•O 2 清除率按式(5)计算:
                                                                                –
            生法对 AMP 中单糖组成进行分析。参照文献[13],                                                 A  A 
            对多糖进行三氟乙酸水解及 PMP 衍生化。以标准单                                   O   2  /  %清除率    1     1  A  2     1  0  0     (5)
            糖的糖醇全乙酰化衍生物作对照。                                                                0  
                                                               式中:A 1 为 0.5 mL 多糖溶液样品与 7 mmol/L 的邻
                 对混合单糖标准溶液和 AMP 水解液进行 HPLC
                                                               苯三酚溶液 1.0 mL 反应液的吸光度;A 2 为无邻苯三
            检测,比较混合对照品与样品的保留时间,确定
                                                               酚反应体系溶液对照组吸光度;A 0 为蒸馏水代替多
            AMP 单糖组成。色谱条件:Agilent XDB-C 18 色谱柱
                                                               糖溶液的空白组吸光度。
            (250 mm×4.6 mm×5 μm);流动相:20 mmol/L 磷
                                                                                 +
                                                               1.2.4.4    清除 ABTS •能力的测定
            酸缓冲溶液(pH  6.7)-乙腈(体积比 82∶18);流
                                                                   首先配制 7 mmol/L 的 ABTS 水溶液和 4.9 mmol/L
            速:1 mL/min;检测波长:250 nm;柱温:30 ℃;
                                                               的过硫酸钾水溶液,二者等体积混合制备 ABTS 母
            进样量:20 μL。
            1.2.3   AMP 紫外-可见光光谱与红外光谱分析                        液,使用前用无水乙醇稀释至 0.5909  mmol/L 工作
                 配制 10  g/L 的多糖水溶液用紫外-可见分光光                    液。精确量取不同浓度的多糖溶液 1.0 mL,然后加
                                                               入已配制好的 ABTS 工作液 4.0 mL,使其充分混匀,
            度计在波长 200~700 nm 进行扫描。称取 AMP 6.8 mg
                                                               静置 30 min 后在 734 nm 处测定其吸光值(A)。空
            与 KBr 研磨充分,压片,用红外光谱仪在 4000~
                   –1
            400 cm 范围内进行扫描。                                    白组用 1.0  mL 蒸馏水代替多糖溶液,对照组用无
                                                                                                       +
                                                                    +
            1.2.4   AMP 抗氧化活性的测定                               ABTS •体系溶液,V C 作为阳性对照。ABTS •清除
            1.2.4.1    清除 DPPH•能力测定                            率按式(6)计算:
                 参照文献[14]方法,以抗坏血酸(V C )作阳性                          ABTS 清除率    / %     1   A   A   2     100    (6)
                                                                                          1
                                                                         +
            对照,在 517 nm 处测定多糖溶液与 DPPH-乙醇(体                                                A 0  
            积分数 95%)反应液吸光值(A)。菜芙蓉多糖 DPPH•                      式中:A 1 为多糖溶液样品的吸光度;A 2 为无 ABTS
            清除率按式(3)计算:                                        反应体系溶液对照组吸光度;A 0 为 1.0 mL 蒸馏水代
                                       A   A                替多糖溶液的空白组吸光度。
                   DPPH清除率    / %   1   1  2     100    (3)   1.2.4.5    清除 NO•能力的测定
                                         A 0  
            式中:A 1 为 2.0  mL 多糖溶液与 2.0  mL  DPPH-乙醇                参考文献[16],利用硝普钠作为 NO•供体,通
            (体积分数 95%)溶液吸光度;A 2 为 2.0 mL 多糖溶                   过 Griess 反应测定 NO•清除能力。V C 作为阳性对照,
                                                               NO•清除率按式(7)计算:
            液与 2.0 mL 乙醇(体积分数 95%)溶液吸光度;A 0
            为 2.0  mL 蒸馏水代替多糖溶液与 2.0  mL  DPPH-乙                    NO•清除率/%=〔1–(A 1 –A 2 )/A 0 )〕×100   (7)
            醇(体积分数 95%)溶液吸光度。                                  式中:A 1 为多糖溶液样品的吸光度;A 2 为蒸馏水代
            1.2.4.2    清除•OH 能力的测定                             替硝普钠反应体系溶液的对照组吸光度;A 0 为 1.0 mL
                 利用 Fenton 反应体系产生•OH,水杨酸显色法                    蒸馏水代替多糖溶液的空白组吸光度。
            测定•OH 清除能力。精密量取 2.0 mL 浓度为 6 mmol/L                1.2.4.6    总还原力的测定
            的 FeSO 4,加入不同浓度的多糖溶液 2.0 mL 和 2.0 mL                   参照文献[17],采用铁氰化钾-三氯化铁法,以
            浓度为 6 mmol/L  的 H 2 O 2 ,迅速混匀,10 min 后加            V C 作为阳性对照测定多糖溶液总还原力。
            入 2.0  mL 浓度为 6  mmol/L 的水杨酸,再次混匀,                 1.2.5   AMP 对质粒 DNA 的保护作用
            37 ℃水浴锅中反应 30  min,在 510  nm 处测定吸光                     取 0.3 µg pBR322 质粒,DNA 3 µL,质量分数
            值(A)。空白组用 2.0 mL 蒸馏水代替多糖溶液,对                       为 1.2%的 H 2 O 2  8 µL,加入不同质量浓度的 AMP
            照组无 H 2 O 2 反应体系溶液,以 V C 作阳性对照。•OH                 7 µL,混匀,37 ℃温浴 1 h 后加入 3 µL 凝胶上样缓
            清除率按式(4)计算:                                        冲液混合均匀,加入到含有 Gelred  核酸染料(美国
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