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第 4 期 陈小强,等: 向日葵茎髓提取物的抑菌活性及机制 ·651·
津杯中注入质量浓度为 100 g/L 的样品液 200 μL, 100、120、140 min 时间点分别取样 5 mL,5000 r/min
以 DMSO 为空白对照,以青霉素(Penicillin)为阳 离心 10 min,取上清液,测定其电导率。
性对照,在 37 ℃的恒温培养箱中培养 16~18 h 后用 1.2.5 菌悬液碱性磷酸酶(AKP)含量的测定
游标卡尺测量其抑菌圈直径。 实验方法同 1.2.4 节,按照 AKP 试剂盒说明书
参考文献[15]方法测定各萃取部位最小抑菌浓 测定各菌悬液吸光度(OD 值),计算 AKP 含量。
度(MIC)。向 96 孔板每孔加入空白营养肉汤培养 1.2.6 菌悬液胞外可溶性蛋白含量的测定
基 100 μL,再向每排的第一孔中加入质量浓度为 实验方法同 1.2.4 节,按照考马斯亮兰试剂盒说
200 g/L 的样品液 100 μL,然后对样品液依次进行 2 明书测定各菌悬液 OD 值,计算可溶性蛋白含量。
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倍稀释后向每孔中加入菌落浓度为 1.010 CFU/L 1.2.7 菌悬液 DNA 含量变化的观测
的不同受试菌悬液 100 μL,此时每孔样品液终质量 依据文献[19]方法进行 EE 处理菌悬液的 DAPI
浓度依次为 50、25、12.5、6.25、3.13、1.56、0.78、 染色观察。将大肠杆菌和金黄色葡萄球菌活化培养
0.39、0.20、0.10 g/L,对照组为 100 μL DMSO+100 μL 至对数期,按体积分数 1%接种量分别接种到 EE 质
菌悬液,将 96 孔板放入 37 ℃的恒温培养箱中避光 量浓度为 3.12 g/L 的营养肉汤培养基中,再以相同
培养 24 h 后,每孔加入体积分数 0.2% TTC 20 μL, 接种量接种到不含 EE 的营养肉汤培养基中作为对
继续避光培养 4 h 后,观察颜色变化。 照,摇床中振荡培养(37 ℃,120 r/min)16~18 h。
参考文献[16]方法测定各萃取部位半数抑制浓 各吸取 2 mL 菌悬液,PBS 清洗 3 次,体积分数为
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度(IC 50 )。将菌落浓度均为 1.010 CFU/L 的 4 种 3%的戊二醛磷酸盐缓冲液固定 10 min,吸去固定
受试菌悬液加入到洁净无菌的 96 孔培养板中,再加 剂,PBS 清洗 3 次,加入体积分数为 0.2%的 Triton
入 50 μL 不同浓度梯度的样品液,设置 3 组重复实 X-100 通透细菌细胞 10 min,吸去 Triton X-100 后,
验,将 96 孔板放入 37 ℃的恒温培养箱中培养 24 h PBS 清洗 3 次,加入 DAPI 染色液,在暗室中染色
后,于 595 nm 处测定其紫外吸收值(OD)。按下式 5~ 10 min,最后滴至载玻片上,封片,在荧光显微
计算抑制率(%): 镜下观察、拍照。
抑制率 /% [1 (A= A 0 t ) /(A c o n A 0 )] 100 依据文献[20]方法进行 EE 处理菌悬液的 DAPI
式中:A 0 为肉汤培养基的 OD 值;A t 为样品液+菌液 染色荧光强度测定。将大肠杆菌和金黄色葡萄球菌
的 OD 值;A con 为菌悬液+生理盐水的 OD 值。以样 活化培养至对数期,按体积分数 1%的接种量分别接
品液浓度为横坐标,抑制率为纵坐标绘图,得到线 种到 EE 质量浓度为 3.12 g/L 的营养肉汤培养基中,
性回归方程,计算当抑制率为 50%时的样品液浓度, 摇床中振荡培养(37 ℃,120 r/min),分别在 8、
即 IC 50 值。 12、16、20、24、28 h 取样 0.2 mL,加入 3 倍体积
1.2.3 扫描电镜观察 的 DAPI 染色液,混匀后暗室中静置 10 min,在 DNA
参考文献[17]方法,取对数生长期的两种菌体, 的激发波长 358 nm 下,用荧光分光光度计检测菌
用质量浓度为 3.12 g/L(4 倍最低抑菌浓度,下同) 体 DNA 的荧光强度,以未经 EE 处理的菌体样液为
的 EE 分别处理 6 h,用 PBS 浸洗 3 次,加入 4 ℃ 对照。
预冷体积分数为 3%的戊二醛磷酸盐缓冲液(pH 1.3 统计分析
7.4)固定,过夜,吸出固定剂,用 PBS 浸洗 2 次, 每个实验重复 3 次取平均值,结果以均值±标准
每次 10 min,再用系列梯度酒精(体积分数 30%、 差(x¯±S)表示。采用 SPSS 20.0 软件进行数据处理,
利用单因素方差分析和 Duncan 法检验多组数据
50%、70%、80%、90%、95%、100%)脱水,每种
体积分数酒精浸洗 2 次,每次 10 min。在室温下进 间差异的显著性,利用 Pearson 法进行相关性分
析,以 P<0.05 表示差异显著,以 P<0.01 表示差异
行干燥,再用真空喷镀法对样品进行导电处理后即
极显著。
制成电镜样品,于 JSM-7500F 扫描电镜下观察菌体
形态变化,以未经 EE 处理的菌体作为空白对照。 2 结果与讨论
1.2.4 菌悬液电导率的测定
参考文献[18]方法,取对数生长期且菌落浓度 2.1 抑菌活性测定
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约为 1.010 CFU/L 的大肠杆菌和金黄色葡萄球菌 天然产物的抑菌效果可通过测定抑菌圈直径来
的菌悬液置于 96 孔板,向其中分别加入 EE 样品液, 进行评价,抑菌圈直径越大,说明该物质抑菌效果
使 EE 质量浓度为 3.12 g/L,空白对照组加无菌水, 越好。各萃取部位对 4 种受试菌抑菌圈直径大小及
置摇床中培养(37 ℃)。在 0、20、40、60、80、 MIC 的影响见表 1。