Page 83 - 201905
P. 83
第 5 期 刘雯恩,等: 优化Ⅰ型胶原蛋白的纯化工艺 ·851·
降解性、止血性等,既可独立使用,又可与其他材 1.2 胶原蛋白的提取与纯化方法
料复合使用 [2-3] ,已被广泛应用于生物医学、美容保 胶原蛋白提取和纯化过程见图 1。
[5]
健 [2-4] 和食品工业等领域 。Ⅰ型胶原蛋白常见提取
[6]
方法有盐提取法、酸提取法 、碱提取法和酶提取
[7]
法等 。盐法与碱法提取的胶原蛋白为胶原蛋白多
肽。酶法提取有较好的专一性,特别是胃蛋白酶可
选择性地将胶原蛋白两端非螺旋结构的端肽降解除
去,这些端肽被认为是产生免疫原反应的物质基础。
使用胃蛋白酶提取可保持Ⅰ型胶原蛋白三螺旋结构
[8]
的稳定性,又可降低胶原蛋白免疫原性 。Ⅰ型胶
原蛋白不溶于水,但可溶于稀醋酸溶液,故采用酸
酶结合提取法较为适用。由于胶原蛋白在 38 ℃以
[9]
上容易变性,因而提取操作尽量低温 。
胃蛋白酶蛋白相对分子质量大小在 35~55 kDa,
会刺激眼睛、呼吸系统和皮肤,是一种过敏源,纯 图 1 胶原蛋白提取和纯化过程图
化胶原蛋白的过程中需将其清除。胃蛋白酶与胶原 Fig. 1 Collagen extraction and purification process
蛋白长期作用,会导致胶原蛋白裂解为胶原蛋白肽
将 500 g 牛跟腱冷冻切片,用体积分数 75%乙
甚至小分子质量的氨基酸。为消除胃蛋白酶的影响,
醇溶液浸泡 6 h 脱脂消毒,用水冲洗干净,粉碎,
通常通过盐析或加热失活胃蛋白酶。但盐析会引入
按固液比 1∶60(g/mL)分散于 0.5 mol/L 醋酸-胃
氯离子,增加后期纯化胶原蛋白的困难,加热操作 蛋白酶溶液中〔m(牛跟腱)∶m(胃蛋白酶)=1∶0.03〕,
步骤会加大胶原蛋白变性的风险,进而破坏了胶原 使用冷循环装置在 10 ℃以下进行酶解提取,提取
蛋白的结构及功效。 过程中缓慢搅拌。72 h 后,提取液于 4 ℃左右
Ⅰ型胶原蛋白的相对分子质量约为 300 kDa, 8000 r/min 离心 5 min,收集上清液,进入纯化阶段。
可被半透膜截留,一些小分子杂质可以从半透膜穿 首先,采用等电点沉淀法去除胃蛋白酶:往上清液
过从而达到分离纯化效果。但这一纯化过程周期长, 中缓慢加入 1 mol/L 氢氧化钠溶液,缓慢搅拌,调
需 7 d 左右 [10-11] ,容易滋生微生物,不利于工业化 节溶液的 pH 至 5.8~7.0,可观察到胶原蛋白沉淀析
生产。本文采用等电点沉淀法,可以快速有效清除 出。静置 2 min,过滤,纯水快速清洗胶原蛋白沉淀
胶原蛋白溶液中的胃蛋白酶;使用超滤纯化技术, 物 3~4 次,即得Ⅰ型胶原蛋白粗提取物 [12] 。
可得到高纯度的Ⅰ型胶原蛋白 [12-13] 。 将粗提物溶于 0.5 mol/L 醋酸配制成 1 g/L 胶原
蛋白溶液,在一定压力下进行超滤纯化柱层析 [13] ,
1 实验部分 纯化层析柱截留相对分子质量为 100 kDa,超滤纯
化过程中压力保持在 0.8 MPa 以下。为保证胶原蛋
1.1 材料与仪器
白的稳定性,尽量使用温度保持 4 ℃的冷循环装置。
牛跟腱、胃蛋白酶,浙江崇山生物制品有限公
纯化过程中,不断加入纯化水,直至纯化后的胶原
司提供;冰醋酸、考马斯亮蓝 R-250、硫酸铜氢氧
蛋白液 pH≈5,即得到高纯度胶原蛋白液。
化钠,AR,天津市大茂化学试剂厂;体积分数 75%
1.3 纯化过程中胃蛋白酶残留量检测
乙醇溶液,德州安捷高科消毒制品公司;Ⅰ型胶原
1.3.1 鞣酸沉淀法
蛋白,SLBQ7099V,美国 Sigma 公司; 取Ⅰ型胶原蛋白析出后的滤液和纯水清洗后的
GL-10MD 大容量高速冷冻离心机,湘仪公司; 水洗滤液,分别加入 50 g/L 鞣酸溶液(5 g 鞣酸纯水
FD-1-50 真空冷冻干燥机,北京博康公司;UV-6000PC 溶解,纯水定容至 100 mL),观察是否有沉淀生成。
紫外分光光度计,上海元析公司;PowerPacTM 通 1.3.2 SDS-PAGE 凝胶电泳法
用电泳仪,Bio-Rad 公司;HYP-3 智能消化炉、KDN- 分别按表 1 和表 2 的配方依次加入,分别配制
812 定氮仪蒸馏装置,上海纤检公司;WQF-510A 出体积分数为 5%浓缩胶和体积分数为 10%分离胶,
傅里叶变换红外光谱仪,北京端利分析公司; 进行恒压电泳,电压为 80 V,待溴酚蓝跑至胶底处
Chirascan 圆二色谱仪,英国应用光物理公司;超滤 停止电泳。将分离胶放入考马斯亮蓝 R-250 溶液中
纯化柱,截留相对分子质量 100 kDa,东莞市方途 染色 30 min,采用乙酸-乙醇脱色液进行脱色至分离
生物科技有限公司。 胶背景色为透明。