Page 135 - 《精细化工》2022年第9期
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第 9 期                 黄冬婷,等:  超声辅助离子液体提取人参多糖工艺及其抗氧化活性                                   ·1853·


            1.4.1.1   不同离子液体种类对人参多糖提取量的影响                      空白对照。再分别加入 100 µL 质量分数为 5%的苯
                 在料液比 1∶30、离子液体质量浓度 8 g/L、水                    酚溶液,迅速加入 2.0 mL 浓硫酸(质量分数为 98%),
            浴温度 70  ℃下超声 30 min,选用不同种类的离子                      摇匀,于沸水浴中加热 30 min。冷却至室温后,空白
            液体(水、1-乙基-3-甲基咪唑溴盐、1-丁基-3-甲基                       溶液作对照,在 490 nm 波长处测定不同质量浓度葡萄
            咪唑溴盐、1-己基-3-甲基咪唑溴盐、1-辛基-3-甲基                       糖标准溶液的吸光度。以吸光度为纵坐标,葡萄糖标
            咪唑溴盐)进行提取,考察离子液体种类对人参多                             准溶液质量浓度为横坐标,绘制葡萄糖标准曲线并得
            糖提取量的影响。                                           到回归方程。
            1.4.1.2   不同离子液体质量浓度对人参多糖提取量                           精密吸取供试品溶液 200 µL,平行 6 份,按照
                    的影响                                        上述过程进行操作,并根据测得吸光度值计算总糖
                 选取 1-己基-3-甲基咪唑溴盐水溶液为提取剂,                      含量(质量分数)。
            料液比 1∶30,水浴温度 70  ℃下超声 30 min,设定                   1.6   人参多糖单糖组成测定
            不同的离子液体质量浓度(2、4、6、8、10 g/L),                           采用高效液相色谱仪对人参多糖的单糖成分进
            考察离子液体质量浓度对人参多糖提取量的影响。                             行测试。
            1.4.1.3   料液比对人参多糖提取量的影响                           1.6.1   样品纯化
                 选取 8 g/L 1-己基-3-甲基咪唑溴盐水溶液为提                       利用 α-淀粉酶去除人参多糖的淀粉。称量 5.00 g
            取剂,水浴温度 70  ℃下超声 30 min,设定不同的                      人参多糖,溶于 500 mL 去离子水,配成人参多糖质
            料液比〔1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50(g∶                    量浓度 10 g/L 的溶液,将 400 U α-淀粉酶加入到人
            mL)〕,考察料液比对人参多糖提取量的影响。                             参多糖溶液中,55  ℃酶解 30 min,在沸水浴中加热
            1.4.1.4   超声时间对人参多糖提取量的影响                          5 min 终止酶解反应。溶液降温至室温后,离心去除
                 选取 8 g/L 1-己基-3-甲基咪唑溴盐水溶液为提                   沉淀,收集上清液。
            取剂,料液比 1∶30,水浴温度 70  ℃,设定不同的                           利用木瓜蛋白酶去除人参多糖中的蛋白质。将
            超声时间(10、20、30、40、50 min),考察超声时                     100 U 木瓜蛋白酶加入上述去除淀粉后的人参多糖
            间对人参多糖提取量的影响。                                      溶液中,35  ℃酶解 2 h,在沸水浴中加热 5 min 终
            1.4.1.5   超声温度对人参多糖提取量的影响                          止酶解反应。溶液降温至室温后,离心去除沉淀,
                 选取 8 g/L 1-己基-3-甲基咪唑溴盐水溶液为提                   收集上清液。将上清液加热浓缩至 40 mL,加入
            取剂,料液比 1∶30,超声 30 min,设定不同的超                       160 mL 无水乙醇,摇匀,–20  ℃冰箱冻存静置 24 h
            声温度(40、50、60、70、80  ℃),考察超声温度                      以上,过滤得到白色固体,将白色固体烘干(60 ℃)
            对人参多糖提取量的影响。                                       得 2.50 g 酶解后的人参多糖。
            1.4.2   正交实验                                           取 1.00 g 酶解后的人参多糖溶于 10 mL 去离子
                 单因素实验初步确定提取参数变量范围后,以                          水中,采用 DEAE-52 纤维素阴离子交换层析柱对人
            单因素实验结果为基础,对离子液体质量浓度、料                             参多糖进行纯化。用 2 倍柱体积蒸馏水进行洗脱。
            液比、超声时间和超声温度进行四因素三水平正交                             试管收集,每管收集 8 mL。采用苯酚-硫酸法对每
            实验,优化人参多糖的提取工艺。                                    管溶液的吸光度进行检测,对在 490 nm 处出现吸收
            1.5   人参多糖总糖含量的测定                                  峰的溶液进行收集,将收集的溶液–40  ℃冷冻干燥
                 溶液配制:精密称取在 105  ℃下干燥至恒重的                      得到 0.6669 g  纯化后的人参多糖。
            无水葡萄糖粉末 1 g,置于 100 mL 容量瓶中,加蒸                      1.6.2   样品水解
            馏水溶解稀释至刻度,摇匀,即得 10.0 g/L 的标准                           称取 5 mg 纯化后的人参多糖置于水热反应釜
            品储备液。精密吸取 0.50 mL 10.0 g/L 的葡萄糖储备                  中,加入 4 mL 三氟乙酸密封,置于 110  ℃烘箱中
            液于 10 mL 容量瓶,加蒸馏水定容至刻度,摇匀,                         反应 4 h。反应结束后,自然冷却至室温,加入甲醇
            即得 0.50 g/L 葡萄糖标准溶液;精密称取人参多糖                       多次旋蒸,除去三氟乙酸,得到水解样品,备用。
            25.0 mg,置于 50 mL 容量瓶中,加蒸馏水溶解稀释                     1.6.3   待测样品衍生
            至刻度,摇匀,即得 0.5 g/L 的供试品溶液;精密称                           精密移取 4.0 mL 水至水解样品中,超声溶解。
            取 5.0 g 苯酚,用 95 g 热水溶解即得质量分数为 5%                   精确吸取 250 μL 样品溶液到 5 mL 离心管中,加入
            的苯酚溶液。                                             250  μL 0.6  mol/L NaOH 溶液和 500  μL 0.4 mol/L
                 分别精密吸取 0.5 g/L 的葡萄糖标准溶液(20、                   PMP-甲醇溶液,70  ℃反应 1 h。冷水中冷却 10 min;
            40、60、80、120、140 µL)于 10 mL 具塞玻璃试管                 加入 500 μL 0.3 mol/L HCl 溶液中和,再加入 1 mL
            中,加蒸馏水补足至 200 µL,另取 200 µL 蒸馏水作                    氯仿涡旋振荡 1 min,3000 r/min 离心 10 min,小心
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