Page 129 - 《精细化工》2023年第5期
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第 5 期              李   莹,等:  过量表达甲酸脱氢酶提高大肠杆菌合成 L-2-氨基丁酸的效率                              ·1049·


                 L-2-氨基丁酸(L-ABA)是一种重要的非天然                      L-ABA 生物合成效率的影响。本研究有望实现
            氨基酸,作为重要的药物中间体可用于左乙拉西坦                             L-ABA 低成本、高效率的生物合成,为 L-苏氨酸的
            等抗癫痫药物的合成          [1-3] 。目前,常用的 L-ABA 合           转产增值奠定坚实的理论基础。
            成工艺有化学合成和生物合成两类。
                 传统化学合成易形成外消旋体,不利于产物纯                          1   实验部分
            化,环境污染严重,因而不宜进行工业化生产。生
                                                               1.1   试剂与仪器
            物合成法主要有生物发酵法、转氨酶法和氨基酸脱                                 L-苏氨酸(HPLC 纯度≥99%),北京索莱宝科
            氢酶法    [4-5] 。生物发酵法主要是对产 L-苏氨酸的大肠
                                                               技有限公司;L-ABA(HPLC 纯度 99%)、2,4-二硝
            杆菌进行改造,改造后的菌株能在含质量浓度为
                                                               基氟苯(HPLC 纯度 98%),上海麦克林生化科技股
            30 g/L 的葡萄糖培养基中合成质量浓度 5.4 g/L 的                    份有限公司;乙腈、甲醇,色谱纯,天津市科密欧
                                              [6]
            L-ABA,糖酸转化率有待进一步提高 。转氨酶法                                                       +
                                                               化学试剂有限公司;辅酶 NAD (烟酰胺腺嘌呤二
            是以 2-酮丁酸为底物,L-天冬氨酸为氨基供体进行
                                                               核苷酸),分析纯,深圳邦泰生物工程有限公司,其
            合成,会产生大量的 L-丙氨酸副产物,不利于后续
                                                               他试剂均为国产分析纯。
            的分离。传统氨基酸脱氢酶法受限于氨基酸脱氢酶
                                                                   FreeZone®冷冻干燥机,美国 Labconco 公司;
            活性较低,对底物转化率不高,且底物 2-酮丁酸本
                                                               DYY-6C 型核酸电泳仪,北京市六一仪器厂;Power
            身也不稳定,这会增加底物和酶的消耗,进而增加                             Pac HC 型蛋白电泳仪,美国 Bio-Rad 公司;EC 2006
            L-ABA 的生产成本       [7-8] 。后来,通过逐步引入 L-苏
                                                               型高效液相色谱(HPLC)系统,大连依利特分析仪器
            氨酸脱氨酶(L-TD)能将廉价的 L-苏氨酸转化成
                                                               有限公司;Hypersil C 18 柱,美国 Thermo Scientific 公司。
            2-酮丁酸,然后通过 L-亮氨酸脱氢酶(L-L-DH)和
                                                               1.1.1   菌株和质粒
            甲酸脱氢酶(FDH)进行 L-ABA 的生物合成,大大                            Escherichia coli BL21 (DE3)、携带高活性甲酸
                                                       [6]
            提高了合成效率,L-ABA 的产率达到了 97.3% 。                                              M
                                                               脱氢酶 CbFDH 和 CbFDH 基因的重组大肠杆菌 E.
            本课题组在前期研究工作中,获得了一系列高活性                             coli BL21  (DE3)/pET28a-CbFDH 和 E. coli BL21
                             [9]
            的 L-亮氨酸脱氢酶 和甲酸脱氢酶               [10] ,前期研究为        (DE3)/pET28a-CbFDH  M  菌株由本课题组构建和保
            L-ABA 的生物合成及实现 L-苏氨酸的转产增值奠                         藏  [10,12] 。其中,与 CbFDH 相比,CbFDH        M  含有
            定了坚实的基础。本研究拟采用图 1 所示的合成路                           S23C/E53V/E202D/E325Q/L184V/K328V 共 6 个位
            线,通过构建含双质粒的重组菌,实现 L-苏氨酸脱                           点 的 突 变。重 组大 肠杆菌 E. coli  BL21 (DE3)/
            氨酶、L-亮氨酸脱氢酶和甲酸脱氢酶 3 种酶共表达,                         pET28a-EsLeuDH [13] 由许建和教授馈赠,表达质粒
            以实现 3 酶级联协同催化 L-苏氨酸合成 L-ABA,进                      pACYCDuet-1 由本课题组保藏。
            而采用全细胞催化的方法高效合成 L-ABA。由于在                          1.1.2   培养基
            羰基不对称胺化还原过程中需要消耗还原型烟酰胺                                 LB 培养基:液体培养基添加(均为质量浓度)
            腺嘌呤二核苷酸(NADH),因此,该反应偶联了甲                           10 g/L 蛋白胨、10 g/L 氯化钠和 5 g/L 酵母提取物,
            酸脱氢酶介导的辅酶再生系统              [11] 。此外,已有研究           固体培养基则需额外添加 20 g/L 琼脂粉,自然 pH,
            报道强化 NADH 的再生能力能够显著提高 L-苯甘                         121  ℃灭菌 20 min,用于大肠杆菌的培养。
            氨酸合成的效率        [10] 。                              1.2    方法

                                                               1.2.1   重组菌的构建
                                                                   从 National Center  for Biotechnology  Information
                                                               (https://ncbi.nlm.nih.gov/)中搜索到一个大肠杆菌来
                                                               源的     L- 苏氨 酸脱 氨酶          EcTD ( GenBank:
                                                               NP_418220.1 ),其对 应基因的 序列号为 :
                                                               NC_000913.3:3955331-3956875。根据此序列设计扩
                                                               增 EcTD 的特异性引物 EcTD-F: CGGGATCCGA-
                                                               TGGCTGACTCGCAACCC(含 BamH  Ⅰ酶切位点)和

               图 1   以 L-苏氨酸为底物合成 L-ABA 的路线示意图                 EcTD-R: CCCAAGCTTCTAACCCGCCAAAAAGAAC
            Fig. 1    Schematic diagram of synthesis route of L-ABA   (含 Hind  Ⅲ酶切位点),并委托苏州弘讯生物技术
                   from L-threonine as substrate
                                                               有限公司进行合成。以 E. coli BL21 (DE3)的基因组
                 因此,本研究试图借助强化甲酸脱氢酶的表达                          DNA 为模板,利用特异性引物 EcTD-F 和 EcTD-R
            来调节辅酶再生能力,并考察不同甲酸脱氢酶对                              进行聚合酶链式反应(PCR)扩增 EcTD 的编码基
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