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第 7 期                  余带兵,等: NMN 转移酶和乙醇脱氢酶共固定化及其动力学特性                                  ·1347·


                                                                                                 2+
            中的循环利用,以提高其生物合成 NADH 的能力。                          NMN、50 mmol/L ATP、50 mmol/L Mn 、质量分数
                          [3]
            例如:Suye 等 曾利用苹果酸酶假单胞菌 hyputa                       为 2%的乙醇中,加入 1.2.1 制备的共固定化双酶,
                               +
            IFO-13182 催化 NAD 合成 NADH,通过优化 NAD             +    混匀。所有液体都用 ddH 2 O(双蒸水)配制。然后
                                         [4]
            转化率达到 100%。Šilhánková 等 在 13 种细菌菌株                 置于 7  ℃的恒温水浴锅中振荡反应 2  h,沸水浴
            和 4 种酵母样生物中,筛选出两种细菌和一种酵母                           1 min 终止酶反应,反应液冰浴冷却 8000 r/min 离心
            菌株的透化细胞,能在葡萄糖作为底物的条件下有                             1  min,取上清液,并在 340  nm 处测定反应产物的
                              +
            效地将添加的 NAD 转化为 NADH,转化效率最高                         吸光值 OD 340 ,代表 NADH 产量。以不加底物 NMN
                             [5]
            可达 90%。Itoh 等 则通过 NADH 的再生提高了棒                     的空白做对照。
            状杆菌苯乙醛还原酶(PAR)合成手性醇的能力。                                NADH 浓度按下式计算:
                     [6]
            Samuel 等 设计两种不同 NADH 再生系统的全细胞                                         c=ΔA/(Kb)             (1)
            生物催化剂工艺提高了枯草芽孢杆菌 168 生产                            式中:ΔA 为吸光度变化值;K 为摩尔吸光系数,它
            2,3-BD 的能力。以上研究均采用细胞作为研究对象
                                                               与吸收物质的性质及入射光的波长 λ 有关;b 为吸
            提高 NADH 的生产能力和再循环,从而降低生产成                                             [12-13]
                                                               收层厚度,单位为 cm            。
            本,但采用酶法生产 NADH 却鲜有研究,尤其是利
                                                                   酶活定义为:在 37  ℃,1 mL 反应体系中,1 min
            用多酶催化体系从烟酰胺单核苷酸 NMN 出发通过
                                                               催化得到 1  mmol  NMN 的酶量为 1  U,比酶活用
            双酶催化合成 NADH。在多酶催化体系中,共固定
                                                               U/mg 或 U/g 表示。
            化酶体系不仅能提高酶的热稳定性和连续操作能
                                                               剩余酶活/%=共固定化双酶重复使用第 n 次后残留酶活/
            力,而且有利于充分发挥多酶体系的协同催化作用,
                                                               共固定化双酶第 1 次使用时残留酶活×100                    (2)
            实现高效转化。因此,本文拟以醛基化的四氧化三
                                                               NADH 产率/%=共固定化双酶实际催化所得 NADH 产量/
            铁磁性纳米颗粒为固定化载体,对 NMN 转移酶和
                                                               共固定化双酶理论 NADH 产量×100                 (3)
            乙醇脱氢酶进行共固定,研究共固定化条件和固定
                                                               1.2.3    共固定化双酶条件的研究
            化性能,并对其固定化双酶的催化动力学进行预测,
                                                                   称取定量的 Fe 3 O 4 @SiO 2 -HN=CH(CH 2 ) 3 CHO 纳
            以期提高生物催化合成 NADH 的效率。
                                                               米颗粒,采用 1.2.1 节方法在不同条件下共固定化
            1    实验部分                                          NMN 转移酶和乙醇脱氢酶,考察 NMN 转移酶
                                                               (3.2~9.7  U/mg)和乙醇脱氢酶(2.1~12.4  U/mg)
            1.1    主要试剂                                        的添加量、固定化 pH(4.0~10.0)、固定化时间
                                        [7]
                 NMN 转移酶粗酶液,自制 ;乙醇脱氢酶、三                        (0.5~3.0 h)、固定化温度(15~40  ℃)对 NADH
            磷酸腺苷(adenosine  triphosphate,简称 ATP),              产率的影响。
            100 mmol/L,生工生物工程上海股份有限公司;四                        1.2.4    共固定化双酶操作稳定性研究
            氧化三铁纳米颗粒,20 nm,苏州恒球石墨烯科技有                              将一定量的共固定化双酶按照 1.2.2 节方法测
            限公司;三丙氨基三乙氧基硅烷(APTES,分析纯)、                         定 NADH 产量,反应结束后磁力倾析,PBS 缓冲液
            戊二醛(质量分数为 25%水溶液),上海国药集团化                          冲洗数次,继续测定 NADH 产量,将第一次检测的
            学试剂有限公司。                                           产量定义为 100%,洗净后用于下一批次的催化反应,
            1.2   方法                                           连续使用多次,检测固定化酶的操作稳定性。
            1.2.1    纳米微粒固定化双酶的制备
                                                               1.2.5    固定化双酶的反应动力学方程
                 将实验室自制的 Fe 3O 4@SiO 2-HN=CH(CH 2) 3CHO            按照 1.2.1 方法共固定化双酶后,在 ATP、乙醇
            纳米颗粒     [8-11]  0.5 g 分散在 10  mL  pH=8.0 的磷酸盐
                                                               等底物充足的条件下,通过不断改变 NMN 的浓度,
            缓冲溶液中,然后将 8.2  U/mg  NMN 转移酶和
                                                               按照 1.2.2 测定其 NADH 产量的变化,以研究其动
            10.3 U/mg 乙醇脱氢酶加入到锥形瓶中的缓冲溶液
                                                               力学原理。
            中,在 25 ℃下振荡 1.5  h。然后磁性分离并洗涤数
            次,直到在漂洗溶液中没有检测到游离双酶,保存                             2    结果与讨论
            在 4 ℃冰箱中。
            1.2.2    固定化效率的测定                                  2.1    双酶固定化次序对固定化效果的影响
                 本研究中固定化效率以测定产物 NADH 产量                            在双酶固定体系中,酶固定先后次序会因载体
            表征。                                                表面与酶结合位点的有限性以及当一种游离酶与固
                 在 1 mol/L pH=7.5 Tris-HCl 缓冲液、300 mmol/L      定化载体结合后产生的空间位阻从而影响另一种酶
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