Page 123 - 《精细化工》2022年第4期
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第 4 期 赵 丹,等: 乳酸菌发酵提取物保护皮肤氧化损伤的作用与机理 ·759·
随着作用时间的延长而增加。说明 FE1 可通过促进 FE1 通过上调 Sirt1 基因以及抗氧化相关基因
β-catenin、FoxO3a 的表达以缓解双氧水作用细胞后 β-catenin、FoxO3a、Tbx3 的表达来增强 GSH-Px、
引起的氧化应激损伤,从而延缓细胞的衰老 [25-26] 。 CAT 与 SOD 3 种抗氧化酶的活性,从而增加 HSF
Tbx3 是 β-catenin 的靶基因,β-catenin 通路的活 的总抗氧化能力,减少 ROS 和 MDA 的产生,进而
化能够上调 Tbx3 的表达,通过调节周期蛋白依赖激 减缓 H 2 O 2 对 HSF 造成的氧化应激损伤。
酶抑制因子来抑制细胞衰老 [27] 。FE1 对 HSF 内 Tbx3
表达影响如图 9d 所示。中剂量和高剂量的 FE1 作 3 结论
用 HSF 后 12~24 h 均表现为对 Tbx3 表达的促进作
所选的 5 种乳酸菌发酵提取物均具有良好的抗
用。且随着作用时间和作用剂量的增加,其上调表达 –
氧化功效,其中,FE1 在清除•OH 和•O 2 能力上优于
的效果逐渐增强,中剂量和高剂量 FE1 作用 24 h 后,
其他 4 种乳酸菌发酵提取物。在双氧水诱导 HSF 损
Tbx3 相对表达量极显著增加(p<0.01),表明 FE1 通
伤模型中,FE1、FE2 和 FE3 对双氧水诱导的 HSF
过促进 β-catenin 的表达调控 Tbx3 的表达,从而调 损伤有显著的保护作用(p<0.05),且在保护作用中,
节周期蛋白激酶抑制因子而延缓细胞衰老 [28] 。
FE1、FE2 和 FE3 可显著降低 HSF 内 ROS 含量、增
衰老标记蛋白(SMP30)是钙结合蛋白,具有
强 GSH-Px 活力(p<0.05)。FE3 能显著降低 MDA
抗凋亡和抗氧化应激的作用,与 β-catenin 一起能够 含量(p<0.05),FE1 可显著提升 HSF 内 CAT、SOD
延缓细胞衰老的进程 [29-30] 。FE1 对 HSF 内 SMP30
活力及总抗氧化能力(p<0.05)。因此,FE1 具有良
表达影响如图 9e 所示。由图 9e 可知,FE1 作用 12 h
后,中、高剂量可促进 SMP30 表达,并且中剂量促 好的减缓 HSF 由于氧化应激导致的损伤作用。基因
水平检测显示,HSF 发生氧化损伤时,FE1 可以通
进效果极为显著(p<0.01)。因此,FE1 可通过促进
过促进 HSF Sirt1 表达并激活 Wnt/β-catenin 通路中
β-catenin 表达以调节 SMP30 的表达,进而增强细胞
抗氧化应激效果而保持细胞活力 [31] 。 关键抗氧化基因 β-catenin、FoxO3a、SMP30、Tbx3
的上调表达以降低氧化水平,从而延缓 HSF 衰老。
信号通路可谓是机体防御氧化应激损伤的最后
FE1 作为植物乳杆菌的发酵提取物,在生化和
一道防线,诸多研究表明,乳酸菌有多个调节氧化
分子水平的抗氧化效果均高于其他乳酸菌发酵提取
应激相关的通路,包括 NF-κB、Wnt/β-catenin、Nrf2、
AKT 等 [32-33] 。FE1 通过调节 Sirt1 与 Wnt/β-catenin 信 物。这可能是由植物乳杆菌分泌的胞外多糖良好的
号通路氧化应激相关基因 β-catenin、FoxO3a、Tbx3、 抗氧化性所赋予的。结果表明,FE1 可作为天然抗
SMP30 的表达来保护 HSF 抵御 H 2O 2 导致的氧化应激 氧化、延缓衰老的功效原料添加到化妆品或食品中,
损伤,这些基因均与细胞的氧化应激、凋亡有关。 为乳酸菌的进一步开发应用提供参考。
因此,也进一步阐明了 FE1 保护下 HSF 的总抗氧化能
参考文献:
力和存活率均高于模型组的机理。
[1] LI X T (李兴太), JI Y (纪莹). Recent advances in mitochondrial
FE1 保护 HSF 抵御氧化应激损伤的作用机制如 oxidative stress and natural antioxidants[J]. Food Science (食品科
图 10 所示。 学), 2015, 36(7): 268-277.
[2] GÜLÇIN İ. Antioxidant properties of resveratrol: A structure-activity
insight[J]. Innovative Food Science & Emerging Technologies, 2010,
11(1): 210-218.
[3] LIU C F, PAN T M. In vitro effects of lactic acid bacteria on cancer
cell viability and antioxidant activity[J]. Drug Food Analysis, 2010,
18(2): 77-86.
[4] LIU J (刘晶), MENG Y (孟杨), ZHAO Z (赵征). Antioxidant
activity of Lactobacillus bulgaric fermented whey[J]. Food Science
and Technology (食品工业科技), 2012, 33(9): 146-149.
[5] EJTAHED H S, MOHTADI N J, HOMAYOUNI R A, et al. Probiotic
yogurt improves antioxidant status in type 2 diabetic patients[J].
Nutrition, 2012, (5): 539-543.
[6] NG C C, WANG C Y, WANG Y P, et al. Lactic acid bacterial
fermentation on the production of functional antioxidant herbal
Anoectochilus formosanus Hayata[J]. Journal of Bioscience, 2011,
111(3): 289-293.
[7] HUANG L (黄丽), YANG P (杨攀), ZENG Q K (曾庆坤), et al.
Antioxidant activity of extracellular secretions of different lactic acid
bacteria[J]. China Brewing (中国酿造), 2019, 38(11): 49-53.
图 10 FE1 保护 HSF 作用机制示意图 [8] LEE D E, HUH C S, RA J, et al. Clinical evidence of effects of
Fig. 10 Schematic diagram of mechanism of FE1 protecting HSF Lactobacillus plantarum HY7714 on skin aging: A randomized,