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第 6 期 梁 良,等: 甲氨蝶呤插层 MgAl-LDH 复合物的制备与释药性能 ·1167·
层状双氢氧化物(Layered Double Hydroxides, 美国 Bio-Rad 公司;CT18RT 型高速台式冷冻离心
LDHs)是一类具备阴离子交换能力的纳米层状材 机,上海天美科技仪器有限公司。
料 [1-3] ,其结构中的层板是由一定比例的二价和三价 Mg(NO 3 ) 2 ·6H 2 O、Al(NO 3 ) 3 ·9H 2 O、NaOH、聚
金属离子与羟基共价结合而成,表面带有正电,板 乙二醇 400、KH 2 PO 4 、K 2 HPO 4 、NaCl、醋酸钠、冰
层间则填充着阴离子以满足电荷平衡的需要。由于 醋酸,AR,国药集团化学试剂有限公司;甲氨蝶呤
LDHs 具有结构可变、低毒性、良好的生物相容性、 (MTX,质量分数 99%),上海阿拉丁生化科技股
较高的阴离子交换能力以及酸性条件下的层板溶蚀 份有限公司;浓盐酸(质量分数 36%)、乙醇(质量
特性等优点,成为近年来药物载体材料的热点研究 分数 95%),西陇化工股份有限公司;A549 和 MG63
对象 [4-7] 。 细胞,中国科学院上海生物化学与细胞生物研究所;
甲氨蝶呤(Methotrexate,MTX)作为一款临床 RPMI1640 培养液、胎牛血清(体积分数 10%)、双
基本阴离子抗肿瘤药物,被广泛应用于急性白血病 抗(青霉素和链霉素),杭州欣越生物工程有限公司;
及实体瘤的治疗,但该药的毒副作用较为明显,高 二甲基亚砜(DMSO),AR、溴化噻唑蓝四氮唑
剂量使用可能导致脏器病变等严重后果 [8-9] 。有报道 (MTT,质量分数大于 98%),上海生物工程有限
指出,将 MTX 插入到 LDHs 层间,形成载药复合物 公司;实验用水均为新煮沸过的去离子水。
后,能够通过 LDHs 板层结构的保护作用,降低毒 1.2 MTX-LDH 的合成、表征与工艺优化设计
副作用且药效显著提升 [10-11] 。然而,在 MTX-LDH 1.2.1 合成
制备过程中,通常存在产物单分散性较差、易发生 称取 0.35 g(8.75 mmol)NaOH 固体溶于 50 mL
沉降等问题,这限制了该载药复合物在临床方面的 去离子水中,再加入 0.091 g(0.20 mmol)MTX,
应用 [12-14] 。为解决这一问题,研究者们分别通过改 超声溶解,并迅速倒入三口烧瓶中,通以氮气保护,
变金属离子物质的量比例 [15] 、引入不同溶剂 [16] 、调 60 ℃下磁力搅拌。然后,称取 0.684 g(2.67 mmol)
整合成方法 [17] 等途径控制复合产物粒径,改善其分 Mg(NO 3 ) 2 ·6H 2 O 和 0.500 g ( 1.33 mmol )
散性能,取得了一定效果,但是缺乏对各工艺参数 Al(NO 3 ) 3 ·9H 2 O 一起溶于 10 mL 去离子水中,再加
的系统研究。另外,考虑到肿瘤细胞环境一般为弱 入 15 mL 聚乙二醇 400。随后,将混合盐溶液以每
酸性 [18-19] ,因此,研究 MTX-LDH 在弱酸环境下的 秒 1~2 滴的速度持续滴加到三口烧瓶中,并用 NaOH
释药机理更具有实际应用意义。 溶液调节 pH 约为 9.5,在此条件下反应 3 h,然后
本文在前期工作的基础上,利用正交实验系统 将反应液离心,分别用乙醇和去离子水反复洗涤沉
研究了反应温度、镁铝物质的量比以及 MTX 和聚 淀物至少 3 次,再用去离子水重悬后置于水热釜中,
乙二醇 400 的加入量对 MTX-LDH 复合物性能的影 在 100 ℃下晶化 12 h,最后取出晶化液待冷却后进
响,优化出最佳制备工艺,在保证较高载药率的前 行冷冻干燥,得到黄色粉末状产物。
提下,得到具有合适粒径分布和良好单分散性的产 空白 LDHs 为未加入 MTX 药物的样品,反应时
物。再选用空白 LDHs 与复合物进行对比表征,分 不加入聚乙二醇 400,其余合成条件与 MTX-LDH
析其性能变化。研究了 MTX-LDH 复合物在不同 pH 相同。
环境中的释放性能,确认其具备 pH 响应型缓释特 1.2.2 表征
性,并阐释了释放机理,为后续生物实验的深入研 分别使用 FTIR、XRD、TG 以及 TEM 对空白
LDHs 与 MTX-LDH 进行表征和分析;另外,通过
究与应用奠定基础。
细胞毒性实验对空白 LDHs 作为载体材料的生物毒
1 实验部分 性进行了初步评价。
细胞毒性实验:将不同种类的癌细胞(肺癌
1.1 主要仪器与试剂 A549 和骨肉瘤 MG63)以 1.0×10 个/孔的密度接种
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VERTEX70 型傅里叶变换红外光谱仪(分辨率 在 96 孔板中,细胞贴壁 24 h 后弃去培养基,每孔
–1
2 cm ,KBr 压片)、D8 ADVANCE 型 X 射线衍射仪 加入 200 μL 不同浓度的空白 LDHs(10、50、100、
〔Cu 靶,靶压 40 kV,靶流 40 mA,扫描速率 6 ()/min〕, 200、400 mg/L)孵育 48 h,之后弃去液体,加入新
德国 Bruker 公司;Power PC 型紫外-可见分光光度 鲜的细胞培养液 100 μL,再加入 30 μL MTT 溶液(5
计,北京莱伯泰科仪器股份有限公司;STA8000 型 g/L),培养 4 h 后,弃去液体,加入 150 μL DMSO
同步热分析仪(N 2 氛围,升温速率 10 ℃/min),美 培养 15 min,随后用酶标仪在 490 nm 下检测酶标板
国 PerkinElmer 公司;90Plus 型激光粒度仪,美国 的吸光度。
Brookhaven 公司;JEM-1230 型透射电子显微镜(工 1.2.3 工艺优化设计
作电压 80 kV),日本 JEOL 公司;680 型酶标仪, 根据本课题组的单因素实验结果,拟选用反应