Page 142 - 《精细化工》2020年第4期
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·776·                             精细化工   FINE CHEMICALS                                 第 37 卷

                                                                       2+
                                                               2.4.2  Ni -NTA 磁珠固定化
                                                                     2+
                                                                   Ni -NTA 磁珠选择性地与远离活性位点中心的
                                                               N 端 6×His 标签结合,属于非共价固定化,可避免
                                                               由羧基磁珠非选择性共价固定化导致的酶活降低。
                                                                                   2+
                                                               如图 5 所示,150 μg Ni -NTA 磁珠饱和固载量约为
                                                               (13.8±0.3)μg 蛋白(n=3),则每 g 磁珠固载量约
                                                               为(91.9±2.3)mg 蛋白(n=3),与羧基磁珠饱和固
                                                               载量比较,约为其 1.7 倍,但此时保留酶活约为
                                                                                              2+
                                                               37.4%±0.5%(n=3)。当 150  μg Ni -NTA 磁珠固载

                图 3   两种方式纯化 6×His-hGSTP1  的 pH 效应             量为(3.8±0.1)μg 蛋白时,即每 g 磁珠固载量约为
             Fig. 3    Effect of pH on purification of 6×His-hGSTP1 with   (25.6±0.9)mg 蛋白(n=3),保留酶活最高 77.5%±
                     2+
                   Ni -NTA and GSH-Sepharose 4B columns
                                                               2.7%(n=3),此时每 g 磁珠所需蛋白用量约为 30 mg。
            2.4   磁珠的固定化 6×His-hGSTP1                          随着固载量增加,保留活性却逐渐降低,可能与蛋
            2.4.1   羧基磁珠固定化                                    白大量固定时空间位阻增大相关。保留酶活更高显
                 在 20 mmol/L 的 MES 缓冲液(pH 6.0)中,MSP-           然有利于后续的筛选,故选择蛋白投料比为 30 mg/g
            COOH-F1 羧基磁珠几乎不能固定化 GSH-Sepharose                  磁珠进行固定化。
            4B 制备的 6×His-hGSTP1。这可能与 GSH-Sepharose
            4B 纯化所得 6×His-hGSTP1 中残留 GSH 氨基竞争反
                                               2+
            应有关,且反复透析也未见改善。但 Ni -NTA 层析
            柱制备的 6×His-hGSTP1 可固定于 MSP-COOH-F1
            羧基磁珠,如图 4 所示。固定磁珠量,逐渐增大蛋
            白用量,直到饱和。600  μg 磁珠最大固载量约为
            (31.3±0.2)μg 蛋白(n=3),按每 g 磁珠固载量计
            算,所得饱和固载容量约为(53.1±0.3)mg 蛋白
            (n=3),但是保留酶活均低于 30%。从蛋白结构看,
            hGSTP1 第 45 位赖氨酸可与底物 GSH 形成氢键而
            成为活性必须氨基酸          [23] ,且 hGSTP1 二聚体狭缝较
                                                                          2+
                                                                   图 5  Ni -NTA 磁珠固定化保留酶活及固载量
            宽,使其活性位点氨基酸较易被磁珠上长链羧基所
                                                               Fig. 5    Response of immobilized quantity  and retention
            接近而修饰失活。实验还发现,对比空间结构相似                                    percentage of apparent  specific activities to
            但活性位点不含赖氨酸的 6×His-hGSTM2 和                                quantities of enzyme added for immobilization on
                                                                        2+
                                                                      Ni -NTA magnetic beads
            6×His-hGSTA1 的固定化,二者均可在相同条件下固
            定于羧基磁珠上且保留酶活可达 80%。说明此活化                           2.5  Ni -NTA 磁珠固定化在筛选条件下的稳定性
                                                                      2+
            羧基固定蛋白氨基的方法没有选择性,仅适用于活                                 Ni -NTA 对 6×His 标签的非共价固定化稳定性
                                                                     2+
            性位点不含可被修饰的氨基酸残基蛋白。                                 不如共价固定化,通常在 pH 8.0 完成。若用于筛选

                                                               抑制剂,还需要考虑其筛选条件下的稳定性。本实
                                                               验采用 pH 8.0 缓冲液固定化并洗涤后,将在 pH 6.5
                                                               酶反应缓冲液中与配体混合物作用进行筛选                    [12-13] 。
                                                                             2+
                                                               如图 6 所示,Ni -NTA 磁珠固定化酶于 pH 6.5 缓冲
                                                               液 0  ℃振摇 8 h 活性保持稳定,且上清未检测到酶
                                                               活力,而游离酶活性下降约 20%。后续筛选总时间
                                                               不超过 4 h,表明固定化酶稳定性较好,满足筛选
                                                               要求。
                                                               2.6   固定化酶对筛选后处理的稳定性

                                                                   筛选过程中,磁珠固定化酶与配体复合物需用
                 图 4  F1 羧基磁珠固定化保留酶活及固载量
            Fig. 4    Response of immobilized quantity  and retention   有机溶剂加热变性提取配体,但若同时有蛋白脱落,
                                                                                                      2+
                   percentages of apparent specific activities to quantitie   将对后续 HPLC-MS 分析带来影响 [12-13] 。Ni -NTA
                   s of enzyme added for immobilization on MSP-   磁珠固定化酶于 pH 6.5 缓冲液 0  ℃连续振荡 1 h 后
                   COOH-F1
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