Page 192 - 《精细化工》2023年第6期
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·1342·                            精细化工   FINE CHEMICALS                                 第 40 卷

            1.3.3   温度对裸藻蛋白泡沫分离的影响                             白溶液:称取 0.12 g 裸藻蛋白溶于 30 mL 蒸馏水中),
                                                                                            4
                 在 pH 为 5.5、装液量为 300 mL、稀释倍数 15                加入 10 mL 大豆油,然后以 1×10  r/min 均质 2 min。
            倍的条件下,探究温度的影响。通过回收率和富集                             在底部吸取乳液 20 μL,立即加入 5 mL 质量分数为
            比确定最佳温度。                                           0.1%的 SDS 水溶液。以质量分数为 0.1%的 SDS 水
            1.3.4   稀释倍数对裸藻蛋白泡沫分离的影响                           溶液为空白对照,在 500 nm 波长处测量裸藻蛋白-
                 在 pH 为 5.5、装液量为 300 mL、温度为 30  ℃              大豆油乳液的吸光度。乳化能力按式(5)测定:
            的条件下,探究稀释倍数的影响。通过回收率和富                                            a / %   A   100          (5)
                                                                                     500
            集比确定最佳稀释倍数。                                        式中:α 为乳化能力,%;A 500 为裸藻蛋白-大豆油
            1.4   裸藻蛋白泡沫分离工艺优化实验                               乳液在 500 nm 波长处的吸光度,下同。
                 根据单因素实验结果,用 Box-Behnken 设计方                       将均质的乳液静置 30 min,用相同的方法测定
            案 [18] ,以 A(pH)、B(装液量)、C(温度)、D(稀                   静置 30 min 后裸藻蛋白-大豆油乳液的吸光度。乳
            释倍数)为因素,以回收率和富集比为指标。响应                             化稳定性按式(6)测定:
            面因素水平设计及其可行性见表 1。                                              a s  / %   (A 30  / A 500 ) 100     (6)
                                                               式中:α s 为乳化稳定性,%;A 30 为裸藻蛋白-大豆油
                        表 1   响应面因素水平设计
                  Table 1    Response surface factor level design   乳液静置 30 min 后在 500 nm 波长处的吸光度。
                                                               1.5.4   裸藻蛋白起泡性和泡沫稳定性的测定
                                             水平
                      因素                                           分别配制质量分数为 0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、
                                      –1      0       1
                                                                                                    4
                                                               1.0%的裸藻蛋白溶液 20 mL,然后以 1×10  r/min 的
                      A               5.0     5.5    6.0
                      B/mL            250     300    350       速率均质 2 min。记录均质结束时的泡沫体积,起泡
                      C/℃             25      30      35       性按式(7)测定:
                      D/倍             10      15      20                     p / %   (V 1 / ) 100V       (7)

                                                               式中:p 为起泡性,%;V 1 、V 分别为均质结束时的
            1.5   裸藻蛋白功能性的测定                                   泡沫和均质前的溶液体积,mL。
            1.5.1   裸藻蛋白持水量的测定                                     在室温下静置 30 min 后记录泡沫体积,泡沫稳
                 裸藻蛋白液经泡沫分离后收集,然后经过冷冻                          定性按式(8)测定:
            干燥(冷冻温度为–35  ℃、冷冻时间为 12 h)制成                                     p  /% =(V  /V  ) 100       (8)
                                                                              s     2  1
            粉末。在离心管中称取 6 份 0.1 g 裸藻蛋白,加入
                                                               式中:p s 为泡沫稳定性,%;V 1 、V 2 分别为均质结
            10 mL 蒸馏水,分别在 20、30、40、50、60、70  ℃                 束时、静置 30 min 后的泡沫体积,mL。
                                      3
            下水浴加热 1 h,然后以 3×10  r/min 离心 15 min,倒
                                                               1.6   UV-Vis 光谱测定
            掉上层清液并称量残渣质量。持水量按式(3)测定:                               用 0.5 mol/L 冰醋酸溶解裸藻蛋白,配制成质量
                                 m   m
                              h   2   1              (3)      浓度为 2 g/L 的溶液,用紫外-可见分光光度计进行
                                    m                          测试,扫描波长范围 200~400 nm,同时以 0.5 mol/L
            式中:h 为持水量,g/g;m、m 1、m 2 分别为样品质量、
                                                               冰醋酸为空白。
            离心管和样品的总质量、离心管和残渣的总质量,g。
                                                               1.7  FTIR 测定
            1.5.2   裸藻蛋白持油量的测定
                                                                   采用 KBr 压片法通过傅里叶变换红外光谱仪对
                 在离心管中准确称量 6 份 0.1 g 裸藻蛋白,加入
                                                               裸藻蛋白进行测试,再通过 Peakfit Version 软件分
            10 mL 大豆油,然后分别在 20、30、40、50、60、
                                        3
            70  ℃下水浴加热 1 h,以 3×10  r/min 离心 15 min,            析裸藻蛋白的二级结构,最后用积分面积计算各二
                                                               级结构的相对含量。
            倒掉上层清液并称量残渣质量。持油量按式(4)测定:
                                 m   m                        1.8   氨基酸测定
                              l   2  1                (4)         采用全自动氨基酸分析仪进行测试,色谱柱为
                                   m
                                                                 +
            式中:l 为持油量,g/g;m、m 1 、m 2 分别为样品质                    Na 型阳离子交换柱(色谱柱尺寸 4.6 mm×60 mm,
            量、离心管和样品的总质量、离心管和残渣的总质                             填料为 3 μm 颗粒);离子交换脂 2622,检测器为紫
            量,g。                                               外-可见光检测器;显色剂为茚三酮/醋酸钠缓冲液;
            1.5.3   裸藻蛋白乳化能力和乳化稳定性的测定                          缓冲液系统为柠檬酸缓冲液 B1(pH 3.2)、B2(pH 3.0)、
                 分别配制质量分数为 0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、                B3(pH 4.0)、B4(pH 4.9);缓冲液流速为 0.4 mL/min;
            1.0%的裸藻蛋白溶液 30 mL(如配制 0.4%的裸藻蛋                     柱温为 55  ℃,反应温度为 135  ℃。
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