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第 3 期 雷 蕾，等: 复合酶协同超声提取藜麦皂苷及其抗氧化性 ·471·

式中：A 0 为空白对照实验测定的吸光度，即未加样
品的 DPPH·吸光度（DPPH·溶液+溶剂）；A 1 为样品
组测定的吸光度，即加入样品反应平衡后的吸光度
（DPPH·溶液+样品溶液）；A 2 为干扰组测定的吸光
度，即样品本身的吸光度（样品溶液+溶剂）。

2 结果与讨论

2.1 单因素实验

2.1.1 纤维素酶用量对藜麦皂苷提取率的影响
图 2 果胶酶用量对提取率的影响
准确称取 2 g 藜麦种皮粉，控制酶解温度为
Fig. 2 Effect of dosage of pectinase on the extraction yield
45 ℃，调节体系 pH 为 5.0，酶解时间为 0.5 h，选
取纤维素酶用量（以藜麦种皮质量为基准，下同） 2.1.3 酶配比对藜麦种皮皂苷提取率的影响
分别为 0、0.5%、1.0%、1.5%、2.0%、2.5%，实验 基于以上纤维素酶和果胶酶单独水解藜麦种皮
方法同 1.2.4 节。以提取率为评价指标，考察了纤维 提取皂苷的酶用量结果，并考虑到经济成本，准确
素酶用量对提取率的影响，结果如图 1 所示。 称取 2 g 藜麦种皮，控制总酶用量为 1.0%、1.5%，
酶解温度为 50 ℃，调节体系 pH 为 5.0，酶解时间
为 0.5 h，实验方法同 1.2.4 节。考察了酶配比 m（纤
维素酶）∶m（果胶酶）分别为 0∶1、1∶2、2∶3、
1∶1、3∶2、2∶1、1∶0 时对提取率的影响，其余
步骤同上。结果如图 3 所示。

图 1 纤维素酶用量对提取率的影响
Fig. 1 Effect of dosage of cellulase on the extraction yield

如图 1 所示，加酶量为 0~1%时，藜麦皂苷提取
率随加酶量的增加而上升。可能是因为酶用量较低

时，酶能够全部参加反应，上升速度较快，在加酶 图 3 酶配比对提取率的影响
量达到 1.0%时，提取率达到最大值，为 81.56%； Fig. 3 Effect of mass ratio of cellulase to pectinase on the
extraction yield
但加酶量高于 1.0%时，提取率下降。可能是由于过

多的酶使浸提液的黏稠度增加，阻碍了皂苷的游离 如图 3 所示，总酶用量为 1.5%，酶配比为 3∶2
扩散，不利于分离提取 [30-31] 。因此，选取最佳纤维 时，藜麦种皮皂苷的提取率最高。酶配比为 0∶1（只
素酶用量为 1.0%。 添加果胶酶），总酶用量为 1.0%的提取率比 1.5%的
2.1.2 果胶酶用量对藜麦种皮皂苷提取率的影响 提取率低；酶配比为 1∶0（只添加纤维素酶），总
准确称取 2 g 藜麦种皮，控制酶解温度为 50 ℃， 酶用量为 1.0%的提取率比 1.5%的提取率高。符合
调节体系 pH 为 5.0，酶解时间为 1.0 h,实验方法同 单酶单因素实验结果。主要是由于，藜麦种皮中含
1.2.4 节。考察了果胶酶用量（以藜麦种皮质量为基 有大量的纤维素以及果胶质，添加纤维素酶以及果
准，下同）对提取率的影响，结果如图 2 所示。 胶酶促进了皂苷向溶剂中的扩散。因此，选取最佳
如图 2 所示，随着果胶酶用量的增加，皂苷提 总酶用量为 1.5%，m（纤维素酶）∶m（果胶酶）
取率不断增加，说明酶催化反应速度与酶浓度呈正 =3∶2 进行后续实验。
相关性，尤其果胶酶用量在 1.0%以下时，增加较为 2.1.4 酶解温度对藜麦种皮皂苷提取率的影响
明显；酶用量在 1.5%时，达到最大值，为 82.2%。 准确称取 2 g 藜麦种皮，控制总酶用量为 1.5%，
从节约的角度考虑，选取最佳果胶酶用量为 1.5%。 酶配比为 3∶2，调节体系 pH 为 5.0，酶解时间为